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ELISA的操作要點
  • 發(fā)布日期:2009-06-17      瀏覽次數(shù):1890
    • 的試劑,良好的儀器和正確的操作是保證ELISA檢測結(jié)果準確可靠的必要條
      件。ELISA的操作因固相載體的形成不同而有所差異,國內(nèi)醫(yī)學檢驗一般均用板式點。
      本文將敘述板式ELISA各個操作步驟的注意要點,珠式、管式及磁性球ELSIA,國外試
      劑均與特殊儀器配合應用,兩者均有詳細的使用說明,嚴格遵照規(guī)定操作,必能得出
      準確的結(jié)果。
       

      4.1 標本的采取和保存
        可用作ELISA測定的標本十分廣泛,體液(如血清)、分泌物(唾液)和排泄物
      (如尿液、糞便)等均可作標本以測定其中某種抗體或抗原成份。有些標本可直接進行
      測定(如血清、尿液),有些則需經(jīng)預處理(如糞便和某些分泌物)。大部分ELISA檢
      測均以血清為標本。血漿中除尚含有纖維蛋白原和抗凝劑外,其他成份均同等于血清。制
      備血漿標本需借助于抗凝劑,而血清標本只要待血清自然凝固、血塊收縮后即可取得。除
      特殊情況外,在醫(yī)學檢驗中均以血清作為檢測標本。在ELISA中血漿和血清可同等應用。
      血清標本可按常規(guī)方法采集,應注意避免溶血,紅細胞溶解時會釋放出具有過氧化物酶活
      性的物質(zhì),以HRP為標記的ELISA測定中,溶血標本可能會增加非特異性顯色。
        血清標本宜在新鮮時檢測。如有細菌污染,菌體中可能含有內(nèi)源性HRP,也會產(chǎn)生假
      陽性反應。如在冰箱中保存過久,其中的可發(fā)生聚合,在間接法ELISA中可使本底加深。
      一般說來,在5天內(nèi)測定的血清標本可放置于4℃,超過一周測定的需低溫冰存。凍結(jié)血清
      融解后,蛋白質(zhì)局部濃縮,分布不均,應充分混勻宜輕緩,避免氣泡,可上下顛倒混和,
      不要在混勻器上強烈振蕩?;鞚峄蛴谐恋淼难鍢吮緫入x心或過濾,澄清后再檢測。反
      復凍融會使抗體效價跌落,所以測抗體的血清標本如需保存作多次檢測,宜少量分裝冰
      存。保存血清自采集時就應注意無菌操作,也可加入適當防腐劑(見3.2.4)。
       

      4.2 試劑的準備
        按試劑盒說明書的要求準備實驗中需用的試劑。ELISA中用的蒸餾水或去離子水,包
      括用于洗滌的,應為新鮮的和高質(zhì)量的。自配的緩沖液應用pH計測量較正。從冰箱中取出
      的試驗用試劑應待溫度與室溫平衡后使用。試劑盒中本次試驗不需用的部分應及時放回冰
      箱保存。
       

      4.3 加樣
        在ELISA中一般有3次加樣步聚,即加標本,加酶結(jié)合物,加底物。加樣時應將所加物
      加在LEISA板孔的底部,避免加在孔壁上部,并注意不可濺出,不可產(chǎn)生氣泡。
        加標本一般用微量加樣器,按規(guī)定的量加入板孔中。每次加標本應更換吸嘴,以免發(fā)
      生交叉污染,也可用一次性的定量塑料管加樣。有此測定(如間接法ELISA)需用稀釋的
      血清,可在試管中按規(guī)定的稀釋度稀釋后再加樣。也可在板孔中加入稀釋液,再在其中加
      入血清標本,然后在微型震蕩器上震蕩1分鐘以保證混和。加酶結(jié)合物應用液和底物應用
      液時可用定量多道加液器,使加液過程迅速完成。
       

      4.4 保溫
        在ELISA中一般有兩次抗原抗體反應,即加標本和加酶結(jié)合物后。抗原抗體反應的完
      成需要有一定的溫度和時間,這一保溫過程稱為溫育(incubation),有人稱之為孵育,在
      ELISA中似不恰當。
        ELISA屬固相免疫測定,抗原、抗體的結(jié)合只在固相表面上發(fā)生。以抗體包被的夾心
      法為例,加入板孔中的標本,其中的抗原并不是都有均等的和固相抗結(jié)合的機會,只有zui
      貼近孔壁的一層溶液中的抗原直接與抗體接觸。這是一個逐步平衡的過程,因此需經(jīng)擴散
      才能達到反應的終點。在其后加入的酶標記抗體與固相抗原的結(jié)合也同樣如此。這就是為
      什么ELISA反應總是需要一定時間的溫育。
        溫育常采用的溫度有43℃、37℃、室溫和4℃(冰箱溫度)等。37℃是實驗室中常用
      的保溫溫度,也是大多數(shù)抗原抗體結(jié)合的合適溫度。在建立ELISA方法作反應動力學研究
      時,實驗表明,兩次抗原抗體反應一般在37℃經(jīng)1-2小時,產(chǎn)物的生成可達。為加速
      反應,可提高反應的溫度,有些試驗在43℃進行,但不宜采用更高的溫度??乖贵w反應
      4℃更為*,在放射免疫測定中多使反應在冰箱中過夜,以形成zui多的沉淀。但因所需
      時間太長,在ELISA中一般不予采用。
        保溫的方式除有的ELISA儀器附有特制的電熱塊外,一般均采用水浴,可將ELISA板
      置于水浴箱中,ELISA板底應貼著水面,使溫度迅速平衡。為避免蒸發(fā),板上應加蓋,也
      可用塑料貼封紙或保鮮膜覆蓋板孔,此時可讓反應板漂浮在水面上。若用保溫箱,ELISA
      板應放在濕盒內(nèi),濕盒要選用傳熱性良好的材料如金屬等,在盒底墊濕的紗布,zui后將
      ELISA板放在濕紗布上。濕盒應先放在保溫箱中預溫至規(guī)定的溫度,特別是在氣溫較低的
      時候更應如此。無論是水浴還是濕盒溫育,反應板均不宜疊放,以保證各板的溫度都能迅
      速平衡。室溫溫育的反應,操作時的室溫應嚴格限制在規(guī)定的范圍內(nèi),標準室溫溫度是指
      20-25℃,但具體操作時可根據(jù)說明書的要求控制溫育。室溫溫育時,ELISA板只要平置
      于操作臺上即可。應注意溫育的溫度和時間應按規(guī)定力求準確。為保證這一點,一個人操
      作時,一次不宜多于兩塊板同時測定。
       

      4.5 洗滌
        洗滌在ELISA過程中雖不是一個反應步驟,但卻也決定著實驗的成敗。ELSIA就是靠
      洗滌來達到分離游離的和結(jié)合的酶標記物的目的。通過洗滌以清除殘留在板孔中沒能與固
      相抗原或抗體結(jié)合的物質(zhì),以及在反應過程中非特異性地吸附于固相載體的干擾物質(zhì)。聚
      苯乙烯等塑料對蛋白質(zhì)的吸附是普遍性的,而在洗滌時又應把這種非特異性吸附的干擾物
      質(zhì)洗滌下來??梢哉f在ELISA操作中,洗滌是zui主要的關鍵技術(shù),應引起操作者的高度重
      視,操作者應嚴格按要求洗滌,不得馬虎。
        洗滌的方式除某些ELISA儀器配有特殊的自動洗滌儀外,手工操作有浸泡式和流水沖
      洗式兩種,過程如下:
        (1)浸泡式 a.吸干或甩干孔內(nèi)反應液;b.用洗滌液過洗一遍(將洗滌液注滿板孔
      后,即甩去);c.浸泡,即將洗滌液注滿板孔,放置1-2分鐘,間歇搖動,浸泡時間不可隨
      意縮短;d.吸干孔內(nèi)液體。吸干應*,可用水泵或真空泵抽吸,也可甩去液體后在清
      潔毛巾或吸水紙上拍干;e.重復操作c和d,洗滌3-4次(或按說明規(guī)定)。在間接法中如本
      底較高,可增加洗滌次數(shù)或延長浸泡時間。
        微量滴定板多采用浸泡式洗滌法。洗滌液多為含非離子型洗滌劑的中性緩沖液。聚苯
      乙烯載體與蛋白質(zhì)的結(jié)合是疏水性的,非離子型洗滌劑既含疏水基團,也含親水基團,其
      疏水基團與蛋白質(zhì)的疏水基團借疏水鍵結(jié)合,從而削弱蛋白質(zhì)與固相載體的結(jié)合,并借助
      于親水基團和水分子的結(jié)合作用,使蛋白質(zhì)回復到水溶液狀態(tài),從而脫離固相載體。洗滌
      液中的非離子型洗滌劑一般是吐溫20,其濃度可在0.05%-0.2%之間,高于0.2%時,可使
      包被在固相上的抗原或抗體解吸附而減低試驗的靈敏度。
        (2)流水沖洗式 流水沖洗法zui初用于小珠載體的洗滌,洗滌液僅為蒸餾水甚至可用
      自來水。洗滌時附接一特殊裝置,使小珠在流水沖擊下不斷地滾動淋洗,持續(xù)沖洗2分鐘
      后,吸干液體,再用蒸餾水浸泡2分鐘,吸干即可。浸泡式猶如盆浴,流水沖洗式則好比
      淋浴,其洗滌效果更為*,且也簡便、快速。已有實驗表明,流水沖洗式同樣也適用于
      微量滴定板的洗滌。洗滌時設法加大水流量或加大水壓,讓水流沖擊板孔表面,洗滌效果
      更佳。
       

      4.6 顯色和比色
       

      4.6.1 顯色
        顯色是ELISA中的zui后一步溫育反應,此時酶催化無色的底物生成有色的產(chǎn)物。反應
      的溫度和時間仍是影響顯色的因素。在一定時間內(nèi),陰性孔可保持無色,而陽性孔則隨時
      間的延長而呈色加強。適當提高溫度有助于加速顯色進行。在定量測定中,加入底物后的
      反應溫度和時間應按規(guī)定力求準確。定性測定的顯色可在室溫進行,時間一般不需要嚴格
      控制,有時可根據(jù)陽性對照孔和陰性對照孔的顯色情況適當縮短或延長反應時間,及時判
      斷。
        OPD底物顯色一般在室外溫或37℃反應20-30分鐘后即不再加深,再延長反應時間,
      可使本底值增高。OPD底物液受光照會自行變色,顯色反應應避光進行,顯色反應結(jié)束時
      加入終止液終止反應。OPD產(chǎn)物用硫酸終止后,顯色由橙黃色轉(zhuǎn)向棕黃色。
        TMB受光照的影響不大,可在室溫中置于操作臺上,邊反應觀察結(jié)果。但為保證實驗
      結(jié)果的穩(wěn)定性,宜在規(guī)定的適當時間閱讀結(jié)果。TMB經(jīng)HRP作用后,約40分鐘顯色達頂
      峰,隨即逐漸減弱,至2小時后即可*消退至無色。TMB的終止液有多種,疊氮鈉和十
      二烷基*(SDS)等酶抑制劑均可使反應終止。這類終止劑尚能使藍色維持較長時間
      (12-24小時)不褪,是目視判斷的良好終止劑。此外,各類酸性終止液則會使藍色轉(zhuǎn)變
      成黃色,此時可用特定的波長(450nm)測讀吸光值。
       

      4.6.2 比色
        比色前應先用潔凈的吸水紙拭干板底附著的液體,然后將板正確放入酶標比色儀的比
      色架中。以軟板為載體的試驗,需先將板置于標準96孔的座架中,才可進行比色。在
      加底物液顯色前,先將軟板邊緣剪凈,這樣,此板就可*平妥坐入座架中。
        比色時應先以蒸餾水校零點,測讀底物孔(未經(jīng)任何反應僅加底物液的孔)和空白孔
      (以生理鹽水或稀釋液代替標本作全過程的孔),以記錄本次試驗的試劑狀況。其后可用
      空白孔以蒸餾水校零點,以上各孔的吸光度需減去空白孔的吸光度,然后進行計算。
        比色結(jié)果的表達以往通用光密度(oplical density,OD),現(xiàn)按規(guī)定用吸光度
      (absorbence,A),兩者含義相同。通常的表示方法是,將吸收波長寫于A字母的右下
      角,如OPD的吸收波長為492nm,表示方法為"A492nm"或"OD492nm"。
       

      4.6.3 酶標比色儀
        酶標比色儀簡稱酶標儀,通常指于測讀ELISA結(jié)果吸光度的光度計。針對固相載
      體形式的不同,各有特制的適用于板、珠和小試管的設計。許多試劑公司配套供應酶標
      儀。酶標儀的主要性能指標有:測讀速度、讀數(shù)的準確性、重復性、度和可測范圍、
      線性等等。優(yōu)良的酶標儀的讀數(shù)一般可到0.001,準確性為±1%,重復性達0.5%。舉
      例說,若某孔測得的A值為1.083,則該孔相對于空氣的真實A值應為1.083±0.01
      (1.073~1.093),重復測定數(shù)次,其A值均應1.083±0.05(1.078~1.088)在之間。酶
      標儀的可測范圍視各酶標儀的性能而不同。普通的酶標儀在0.000~2.000,新型號的酶標
      儀上限拓寬達2.900,甚至更高。超出可測上限的A值常以"*"或"over"或其它符號表示。應
      注意可測范圍與線性范圍的不同,線性范圍常小于可測范圍,比如某一酶標儀的可測范圍
      為0.000~2.900,而其線性范圍僅0.000~2.000,這在定量ELISA中制作標準曲線時應予注
      意。
        酶標儀不應安置在陽光或強光照射下,操作時室溫宜在15~30℃,使用前先預熱儀器
      15-30分鐘,測讀結(jié)果更穩(wěn)定。
        測讀A值時,要選用產(chǎn)物的敏感吸收峰,如OPD用492nm波長。有的酶標儀可用雙波
      長式測讀,即每孔先后測讀兩次,*次在zui適波長(W1),第二次在不敏感波長
      (W2),兩次測定間不移動ELISA板的位置。例如OPD用492nm為W1,630nm為W2,
      zui終測得的A值為兩者之差(W1-W2)。雙波長式測讀可減少由容器上的劃痕或指印等造
      成的光干擾。
        各種酶標儀性能有所不同,使用中應詳細新聞記者說明書。
       

      4.7 結(jié)果判斷
       

      4.7.1 定性測定
        定性測定的結(jié)果判斷是對受檢標本中是否含有待測抗原或抗體作出"有"或"無"的簡單
      回答,分別用"陽性"、"陰性"表示。"陽性"表示該標本在該測定系統(tǒng)中有反應。"陰性"則為
      無反應。用定性判斷法也可得到半定量結(jié)果,即用滴度來表示反應的強度,其實質(zhì)仍是一
      個定性試驗。在這種半定量測定中,將標本作一系列稀釋后進行試驗,呈陽性反應的zui高
      稀釋度即為滴度。根據(jù)滴度的高低,可以判斷標本反應性的強弱,這比觀察不稀釋標本呈
      色的深淺判斷為強陽性、弱陽性更具定量意義。
        在間接法和夾心法ELSIA中,陽性孔呈色深于陰性孔。在競爭法ELISA中則相反,陰
      性孔呈色深于陽性孔。兩類反應的結(jié)果判斷方法不同,分述于下。
       ?。?) 間接法和夾心法
        這類反應的定性結(jié)果可以用肉眼判斷。目視標本也無色或近于無色者判為陰性,顯色
      清晰者為陽性。但在ELSIA中,正常人血清反應后??沙霈F(xiàn)呈色的本底,此本底的深淺因
      試劑的組成和實驗的條件不同而異,因此實驗中必須加測陰性對照。陰性對照的組成應為
      不含受檢物的正常血清或類似物(見3.6)。在用肉眼判斷結(jié)果時,更宜用顯色深于陰性
      對照作為標本陽性的指標。
        目視法簡捷明了,但頗具主觀性。在條件許可下,應該用比色計測定吸光值,這樣可
      以得到客觀的數(shù)據(jù)。先讀出標本(sample,S)、陽性對照(P)、和陰性對照(N)的吸
      光值,然后進行計算。計算方法有多種,大致可分為陽性判定值法和標本與陰性對照比值
      法兩類。
        a. 陽性判定值
        陽性判定值(cut-off value)一般為陰性對照A值加上一個特定的常數(shù),以此作為判斷
      結(jié)果陽性或陰性的標準。
        用此法判斷結(jié)果要求實驗條件十分恒定,試劑的制備必須標準化,陽性和陰性的對照
      品應符合一定的規(guī)格,須配用精密的儀器,并嚴格按規(guī)定操作。陽性判定值公式中的常數(shù)
      是在這特定的系統(tǒng)中通過對大量標本的實驗檢測而得到的?,F(xiàn)舉某種檢測HBsAg的試劑盒
      為例。試劑盒中的陰性對照品為不含HBsAg的復鈣人血漿,陽性對照品HBsAg的含量標明
      為P=9±2ng/ml。每次試驗設2個陽性對照和3個陰性對照。測得A值后,先計算陰性對照A
      值的平均數(shù)(NCX)和陽性對照A值的平均數(shù)(PCX),兩個平均數(shù)的差(P-N)必須大于
      一個特定的數(shù)值(例0.400),試驗才有效。3個陰性對照A值均應≥0.5×NCX,并≤1.5
      ×NCX,如其中之一超出此范圍,則棄去,而已另兩個陰性對照重新計算NCX;如有兩個
      陰性對照A值超出以上范圍,則該次實驗無效。陽性判定值按下式計算:
        陽性判定值=NCX+0.05
        標本A值>陽性判定值的為陽性,小于陽性判定值的為陰性。應注意的是,式中0.05
      為該試劑盒的常數(shù),只適合于該特定條件下,而不是對各種試劑均可通用。
        根據(jù)以上敘述可以看出,在這種方法中陰性對照和陽性對照也起到試驗的質(zhì)控作用,
      試劑變質(zhì)和操作不當均會產(chǎn)生"試驗無效"的后果。
        b.標本/陰性對照比值
        在實驗條件(包括試劑)較難保證恒定的情況下,這種判斷法較為合適。在得出標本
      (S)和陰性對照(N)的A值后,計算S/N值。也有寫作P/N的,這里的P不代表陽性
      (positive),而是病人(patient)的縮寫,不應誤解。為避免混淆,更宜用S/N表示。在早
      期的間接法ELISA中,有些作者定出S/N為陽性標準,現(xiàn)多為各種測定所沿用。實際上每一
      測定系統(tǒng)應該用實驗求出各自的S/N的閾值。更應注意的是,N所代表的陰性對照是不含受
      檢物質(zhì)的人血清。有的試劑盒中所設陰性對照為不含蛋白質(zhì)或蛋白質(zhì)含量較底的緩沖液,
      以致反應后產(chǎn)生的本底可能較正常人血清的本底低得多。因此,這類試劑盒規(guī),如N<0.05
      (或其他數(shù)值),則按0.05計算,否則將出現(xiàn)假陽性結(jié)果。
       ?。?)競爭法
        在競爭法ELISA中,陰性孔呈色深于陽性孔。陰性呈色的強度取決于反應中酶結(jié)合物
      的濃度和加入競爭抑制物的量,一般調(diào)節(jié)陰性對照的吸光度在1.0-1.5之間,此時反應zui為
      敏感。
        競爭法ELISA不易用自視判斷結(jié)果,因肉眼很難辨別弱陽性反應與陰性對照的顯色差
      異,一般均用比色計測定,讀出S、P和N的吸光值。計算方法主要也有兩種,即陽性判定
      值法和抑制率法。
        a. 陽性判定值法
        與間接法和夾心法中的陽性判定值法基本相同,但在計算公式中引入陽性對照A值,
      現(xiàn)舉某種檢測抗HBc的試劑盒為例。試劑盒中的陰性對照為不含抗HBc的復鈣人血漿,陽
      性對照中抗HBc含量為125±100u/ml。每次試驗設2個陽性對照和3個陰性對照。測得A值
      后,先計算陰性對照A值的平均值(NCX)和陽性對照A值的平均數(shù)(PCX),兩個平均數(shù)
      的差(N-P)必須大于一個特定的數(shù)值(例如0.300),試驗才有效。3個陰性對照A值均應
      小于2.000,而且應≥0.5×NCX并≤1.5×NCX,如其中之一超出此范圍,則棄去,而以另
      2個陰性對照重新計算×NCX;如有2個陰性對照A超出以上范圍,則該次實驗無效。陽性
      判定值按下式計算:
        陰性判定值=0.4×NCX+0.6×PCX
        標本A值≤陽性判定值的反應為陽性,A>陽性判定值的反應為陰性。
        b. 抑制率法
        抑制率表示標本在競爭結(jié)合中標本對陰性反應顯色的抑制程度,按下式計算:
        抑制率(%)= (陰性對照A值-標本A值)×100%/陰性對照A值
        一般規(guī)定抑制率≥50%為陽性,<50%為陰性。
       

      4.7.2 定量測定
        ELSIA操作步驟復雜,影響反應因素較多,特別是固相載體的包被難達到各個體之間
      的一致,因此在定量測定中,每批測試均須用一系列不同濃度的參考標準品在相同的條件
      下制作標準曲線。測定大分子量物質(zhì)的夾心法ELISA,標準曲線的范圍一般較寬,曲線zui
      高點的吸光度可接近2.0,繪制時常用半對數(shù)紙,以檢測物的濃度為橫坐標,以吸光度為
      縱坐標,將各濃度的值逐點連接,所得曲線一般呈S形,其頭、尾部曲線趨于平坦,中央
      較呈直線的部分是的檢測區(qū)域。甲胎蛋白質(zhì)ELISA測定的標準曲線示例見圖4-1。
        測定小分子量物質(zhì)常用競爭法(參見2.2),其標準曲線中吸光度與受檢物質(zhì)的濃度
      呈負相關。標準曲線的形狀因試劑盒所用模式的差別而略有不同。ELISA測定的標準曲線
      示例見圖4-2。注意圖中橫坐標為對數(shù)關系,這更有利于測定系統(tǒng)的表達。

       

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